1、細胞核著(zhù)色不佳
（1）細胞核著(zhù)色過(guò)淺：
1）鹽酸分化時(shí)間過(guò)長(cháng)或蘇木素染液時(shí)間過(guò)長(cháng)。需要縮短分化時(shí)間或延長(cháng)堿化時(shí)間；每日加入少量新鮮蘇木素染液或重新配制蘇木素液。

2）在固定之前制片干燥。所以對巴氏染色的制片需要嚴格遵守濕固定的原則。

3）自來(lái)水的PH值偏酸性。使用堿性溶液。
（2）細胞核著(zhù)色過(guò)深：
1）鹽酸溶液濃度不夠。適當加入幾滴鹽酸以增加濃度。

2）制片用高于95％以上濃度的酒精固定后可以出現染色過(guò)深。應用95％酒精固定。

2、細胞漿著(zhù)色不佳
（1）如果全片內胞漿都淡染，則需要延長(cháng)染色時(shí)間或更換新液。
（2）如果胞漿不分色，均為淺紅色。制片在固定前干燥或制片被有大量球菌樣細菌影響胞漿染色。此情況可以適當增加染色時(shí)間能夠部分糾正不分色狀況。

（3）胞漿染成灰色或紫色，是由于蘇木素染色時(shí)間過(guò)長(cháng)或鹽酸分化不佳。經(jīng)過(guò)褪色后重新蘇木素可以糾正。

（4）由于標本的不同，同樣配方的EA染液可造成偏藍、偏綠和偏紅，對不同的標本應該使用不同的EA染液。一般認為，EA36和EA50用于婦科標本，而EA65或改良EA用于非婦科標本。
（5）胞漿不分色的另一重要原因是由于EA染液的PH值不恰當所致。如染色為紅色，可以加少許磷鎢酸溶液糾正；如染色均為藍色或綠色，可以加少許飽和碳酸鋰溶液糾正。對于改良EA染液，每100ml染液加入2ml冰醋酸后染色效果更佳；染液使用更持久。    【細胞保存液】如何提高細胞凍存成功率？